Enfoque Euler en Biorreactores
El enfoque Euler en biorreactores se supone que todas las fases están en el marco euleriano, es decir, se supone que el marco de referencia es estacionario y que el fluido pasa a través del volumen de control, y las ecuaciones que gobiernan, como el balance de cantidad de movimiento, el balance de masa y calor son resuelto para el fluido que fluye que es fase continua.
Todas las fases se tratan como un continuo separado y comparten el mismo dominio.
Como se mencionó anteriormente, este enfoque se prefiere para los casos en los que la fracción de volumen de la fase dispersa es superior al 10 %.
Los ejemplos en los que se prefiere este enfoque incluyen el modelado de lecho fluidizado, reactor agitado multifásico y reactores de columna de burbujeo.
Como las fases también pueden interpenetrarse entre sí, estas interacciones deben tenerse en cuenta y esto se logra utilizando el término de intercambio de momento de interfase.
Además, el promedio de las ecuaciones gobernantes se realiza por unidad de volumen con la suposición
donde 𝛼k es la fracción de volumen de una fase particular y “n” es el número total de fases. La ecuación de continuidad entonces se convierte en
donde 𝜌k es la densidad, Uk es la velocidad media de la fase «k» y Spk es la tasa de transferencia de masa entre las fases «p» y «k». Entonces, la ecuación de la cantidad de movimiento se puede escribir como
donde Fk es el término de intercambio de impulso de interfase entre la fase «k» y todas las demás fases. Cabe señalar que en el enfoque Euler en biorreactores la presión es común para todas las fases y, por lo tanto, no tiene ningún subíndice en la ecuación con el enfoque Euler en biorreactores. El término de intercambio de impulso de interfase es responsable de todas las interacciones mencionadas anteriormente entre las fases y es un diferenciador clave entre los flujos multifásicos y monofásicos.
En este enfoque, todas las fases se modelan en el marco euleriano y, por lo tanto, el modelado implica resolver las ecuaciones de continuidad, cantidad de movimiento y transporte de masa y energía simultáneamente para todas las fases.
En el caso de sistemas de dos fases, la fase dispersa (como burbujas o gotas) está separada de la fase continua por un límite.
Este límite representa una geometría sólida a través de la cual fluye el fluido y ejecuta movimiento bajo la influencia del flujo a su alrededor.
Cuando la interfaz no es estacionaria, la aplicación de una condición de contorno se vuelve difícil.
Por lo tanto, las ecuaciones se resuelven para todas las fases y se captura el movimiento de todas las fases, capturando así indirectamente el movimiento de la interfaz.
VOF se utiliza principalmente para simular las propiedades interfaciales, como la adhesión a la pared y la tensión superficial.
Este enfoque es útil para modelar solo unas pocas partículas de fase dispersa porque requiere recursos computacionales significativamente grandes.
Dado que todos los fluidos comparten un solo conjunto de ecuaciones, el modelo se puede expresar como
El método de seguimiento frontal se usa para resolver estas ecuaciones numéricamente y es engorroso desde el punto de vista computacional.
Dado que un volumen de control contiene más de un fluido, las ecuaciones mencionadas anteriormente se resuelven utilizando las propiedades de la mezcla.
donde 𝛼k es la fracción volumétrica de la fase “k” en el volumen de control. El valor de la fracción de volumen se calcula resolviendo la ecuación de continuidad de la fracción de volumen para N−1 fases.
Debe destacarse que la fracción de volumen no puede determinar la interfaz exacta, ya que diferentes configuraciones de interfaz pueden conducir a las mismas fracciones de volumen.
Por lo tanto, se aplican varias técnicas diferentes para calcular la interfaz exacta.
Hinze ha definido el flujo turbulento como «una condición irregular de flujo en la que varias cantidades muestran una variación aleatoria con las coordenadas de tiempo y espacio, de modo que se pueden discernir valores promedio estadísticamente distintos».
Se observa en el fluido que fluye a medida que aumenta el número de Reynolds.
El cizallamiento es la principal fuente de energía que introduce turbulencia en el flujo laminar.
Por lo tanto, se puede afirmar que si se reduce el corte, el flujo turbulento también se reduciría a laminar y el número de Reynolds disminuiría.
Hasta ahora, no se ha modelado la transición de flujo laminar a turbulento.
Las teorías existentes pueden predecir la transición para pequeñas perturbaciones, pero no para grandes perturbaciones.
Todas estas teorías funcionan bien con un número de Reynolds alto, pero no funcionan con un número de Reynolds bajo.
La ecuación de Navier-Stokes no se puede aplicar directamente a los flujos turbulentos, ya que el flujo es muy complejo para determinar la dinámica de fluidos en cada punto.
Por lo tanto, es necesario agregar nuevos términos a estas ecuaciones para dar cuenta de las fluctuaciones causadas por la turbulencia.
Si se promedian estas ecuaciones en el espacio o el tiempo, entonces el flujo se puede analizar en mayor medida.
Así, para resolver el flujo turbulento en tanques de acero inoxidable, la variable instantánea (velocidad, temperatura, etc.) se divide en dos partes: la variable media y la variable de fluctuación.
Las variables medias se pueden determinar experimentalmente y las variables de fluctuación se pueden modelar para lograr una visualización completa del flujo.
El modelado de las fluctuaciones requiere la conversión de las fluctuaciones desconocidas en variables conocidas que puedan evaluarse fácilmente.
Estas ecuaciones se promedian a lo largo del tiempo. Este método se llama promedio de Reynolds.
La fenomenología de la cascada de energía de Richardson-Kolmogorov-Taylor dice que la turbulencia contiene remolinos de varios tamaños.
Los remolinos grandes son inestables, por lo que se rompen y dan energía a los remolinos más pequeños.
Este proceso continúa hasta que la energía se disipa en forma de disipación viscosa.
Definición de una fase en biorreactores
La definición de una fase en biorreactores se puede establecer como el estado termodinámico en el que existe cualquier componente.
Por lo tanto, los flujos multifásicos se refieren a flujos cuando está presente más de una fase en biorreactores.
La mayoría de los reactores industriales tienen procesos de flujo multifásico.
En tales casos, incluso pequeños cambios en el diseño del reactor pueden dar como resultado grandes cambios en la hidrodinámica del reactor.
Los flujos multifásicos se pueden clasificar en varias categorías según la termodinámica (p. ej., gas-sólido, gas-líquido, líquido-líquido) o según los regímenes de flujo.
Ejemplos de estos últimos incluyen flujo disperso en el que solo una fase es continua mientras que todas las demás están dispersas, flujos multifásicos como el flujo de burbujas de gas en líquido, partículas sólidas en líquido o gas y gotitas de líquido en gas, flujos separados en los que todas las fases son de modo semicontinuo y tienen interfaces para diferenciarlos como el flujo anular y el flujo en chorro, y finalmente, los flujos mixtos en los que están presentes tanto los flujos separados como los dispersos, algunas fases son discretas y otras son semicontinuas como el flujo anular burbujeante y flujo anular de gotas.
El modelado CFD de flujo multifásico implica la definición de un régimen de fase/flujo, la formulación de las ecuaciones de gobierno y, finalmente, la solución de las ecuaciones de gobierno. Los enfoques que se utilizan comúnmente incluyen.
1) Enfoque Euleriano – Lagrangiano que implica la aplicación del enfoque Euleriano para la fase en biorreactores continua y el marco Lagrangiano para la fase dispersa.
2) Euleriano: enfoque euleriano que implica la aplicación del enfoque euleriano para ambas fases sin tener en cuenta explícitamente la interfaz
3) enfoque de volumen de fluido que implica la aplicación del marco Euleriano para ambas fases con reforma de la interfaz en base al volumen.
Enfoque Euleriano-Lagrangiano
Se prefiere este enfoque cuando el objetivo es modelar el movimiento de partículas, incluidas las colisiones de traslación, rotación y partícula-partícula que ocurren en procesos tales como reacciones químicas o transferencia de calor y masa entre la fase dispersa y la fase en biorreactores gaseosa a escala de partículas individuales.
En el enfoque Euleriano-Lagrangiano, la fase dispersa se simula resolviendo la ecuación de movimiento mientras que la fase continua se simula resolviendo la ecuación de Navier-Stokes.
La ecuación de movimiento para una sola partícula en fase dispersa se escribe como
donde mp y Up son la masa y la velocidad media de la partícula, respectivamente.
El lado derecho de la ecuación representa la suma de todas las fuerzas que actúan sobre la partícula, mientras que el lado izquierdo de la ecuación denota la tasa de cambio del momento.
La fuerza, Fp, es la fuerza del gradiente de presión de fase continua y Fg es la fuerza gravitatoria que actúa sobre la partícula. Ambas fuerzas pueden combinarse y escribirse como
donde Vp es el volumen de la partícula y p es la presión de la fase continua.
La fuerza de arrastre en la partícula debido a la velocidad relativa entre la fase continua y la fase dispersa, FD, en el número de Reynolds más alto, se puede indicar como
donde el subíndice “c” denota la fase continua y “p” denota la fase de partículas. CD es el coeficiente de arrastre y depende del régimen de flujo si el flujo es laminar o turbulento y su valor cambia en consecuencia.
Otras fuerzas que se pueden incluir son la fuerza de sustentación, las fuerzas de masa añadida y las fuerzas de Basset que actúan sobre la partícula. La vorticidad o cizallamiento en la fase continua también aplica fuerza sobre la partícula de la fase dispersa.
Esta fuerza está incluida en la fuerza de sustentación. Cuando la fase dispersa se mueve hacia arriba, se lleva consigo una parte de la fase continua.
Esto se suma a la masa de las partículas de la fase dispersa.
Como la fase dispersa y la fase continua no pueden ocupar el mismo espacio físico simultáneamente, la masa agregada se modela como un volumen de fluido que se mueve con el objeto por simplicidad matemática.
Esta masa adicional a la fase dispersa contribuye a la «fuerza de masa virtual» o «fuerza de masa añadida».
Otras fuerzas que pueden desempeñar un papel incluyen las fuerzas de Basset que explican los efectos viscosos y el retraso en el desarrollo de la capa límite a medida que la velocidad relativa cambia con el tiempo.
Sin embargo, la magnitud es muy inferior en comparación con las fuerzas de arrastre, por lo que a menudo se ignoran durante la simulación.
Las fuerzas principales que deben tenerse en cuenta incluyen la fuerza de arrastre y la fuerza de presión que actúan sobre la fase dispersa.
Para resolver el flujo de la fase continua, se requiere la velocidad de la fase continua.
Este último se puede calcular resolviendo simultáneamente la ecuación de continuidad y la ecuación de Navier-Stokes para la fase continua
donde Sc y Scm son los términos fuente para la masa y el momento, respectivamente.
Estos términos representan el intercambio entre la fase continua y la fase dispersa.
Cuando la fracción de volumen de la fase dispersa es demasiado baja, se puede ignorar el efecto de la fase dispersa en la fase continua, reduciendo así las ecuaciones de la fase continua a las de la fase única.
La interacción entre la fase dispersa y la fase continua depende del grado de acoplamiento entre las fases.
El acoplamiento puede ser unidireccional cuando la fracción de volumen de la fase dispersa es demasiado baja y entonces se puede suponer que no afectará a la fase continua pero sí a la fase continua.
En un acoplamiento bidireccional, la fase dispersa afecta a la fase continua y viceversa, mientras que en un acoplamiento cuádruple también se tienen en cuenta las interacciones partícula-partícula.
A medida que aumenta el número de partículas a simular, el tiempo computacional requerido para realizar la simulación siguiendo el enfoque Euleriano-Lagrangiano también aumenta y, por lo tanto, el uso de este enfoque generalmente se limita a los casos en que la fracción de volumen de la fase dispersa no excede el 10%.
Para los casos donde la fracción de volumen de la fase dispersa es más alta o para los casos donde las interacciones partícula-partícula de la fase dispersa son fuertes, el enfoque de Euler-Euler es más eficiente y se analiza en la siguiente sección.
Operaciones unitarias biorreactores de tanques de acero
La mayoría de las operaciones unitarias que se utilizan en el bioprocesamiento implican flujos multifásicos.
Esto es particularmente cierto para los biorreactores de tanques de acero agitado continuo (CSTR) que se usan comúnmente como biorreactores o fermentadores.
En estos reactores, el gas se rocía en un medio que consta de medios líquidos y celdas sólidas.
La mezcla inversa y el desvío de gas causados por una mezcla deficiente pueden dar lugar a zonas muertas o estancadas.
Estos, a su vez, crean gradientes dentro del medio de trabajo y dan como resultado un suministro inadecuado de nutrientes y oxígeno a las células.
El conocimiento de la hidrodinámica de los biorreactores de tanques de acero es esencial para comprender el flujo no ideal dentro del biorreactor.
Cuando se trata de flujos monofásicos, la dinámica del fluido se puede determinar fácilmente resolviendo simultáneamente la ecuación de continuidad y la ecuación de Navier-Stokes.
Sin embargo, en el caso de flujos multifásicos, la complejidad aumenta notablemente y es necesario tener en cuenta muchos factores para llegar a conclusiones precisas.
Estos incluyen el intercambio de cantidad de movimiento entre las fases, la transferencia de masa entre las fases y la absorción de una fase en otras.
La mezcla adecuada y la retención de gas en un reactor juegan un papel importante en la determinación de su rendimiento.
La mezcla perfecta es una condición en la que hay uniformidad en la concentración de cada especie en el reactor.
La mayoría de los reactores están diseñados sobre la base de la suposición de una mezcla perfecta, lo que da como resultado errores entre las predicciones y las mediciones reales, y los errores aumentan con el tamaño del reactor.
En realidad, el campo de flujo dentro del reactor es inherentemente inestable y los remolinos turbulentos que se forman en el reactor no son uniformes, lo que da como resultado perfiles de flujo inestables.
Teniendo en cuenta la necesidad de una mezcla uniforme en un reactor, la industria realiza esfuerzos considerables para acercarse lo más posible al estado ideal.
Una buena mezcla da como resultado una transferencia de masa eficiente de la fase dispersa a la fase continua y también una concentración uniforme de todas las especies en el reactor.
En general, los biorreactores de tanques de acero están equipados con impulsores que pueden operar a diferentes velocidades del impulsor y, por lo tanto, brindan un mejor contacto y un área interfacial alta entre las fases.
Esto da como resultado un mayor coeficiente de transferencia de masa entre las fases del reactor.
En la industria biotecnológica, los reactores de tanque agitado aireados se usan comúnmente para cultivar células microbianas y de mamíferos.
El oxígeno se purga a través del medio utilizando un rociador colocado en el fondo del reactor.
La formación de productos a menudo depende de la velocidad a la que se transfiere el oxígeno de una fase a otra.
Para medir la transferencia de oxígeno entre las fases, se utilizan comúnmente parámetros como la retención de gas y el coeficiente de transferencia de masa volumétrica.
La distribución del tamaño de la burbuja también es un factor importante ya que afecta directamente el área interfacial entre las diferentes fases.
La dinámica de fluidos computacional (CFD) se usa ampliamente para simular la hidrodinámica dentro del biorreactor resolviendo la ecuación de continuidad y la ecuación de Navier-Stokes simultáneamente.
El volumen del sistema se divide en volúmenes de control más pequeños (llamados celdas) y las ecuaciones de cantidad de movimiento se resuelven numéricamente para cada uno de los volúmenes de control.
Para evitar complejidades matemáticas, muchos investigadores asumen un solo tamaño de burbuja para la fase gaseosa en el reactor.
Esto hace que las simulaciones sean computacionalmente simples y, por lo tanto, más rápidas.
Sin embargo, en un proceso real, el tamaño de la burbuja cambia a medida que la fase gaseosa se mueve dentro del reactor.
Las burbujas salen del rociador y luego se descomponen en burbujas más pequeñas a medida que pasan por la zona de alto cizallamiento alrededor del agitador.
El área interfacial por unidad de volumen del reactor aumenta drásticamente cuando esto sucede y esto es, de hecho, responsable del aumento en la tasa de transferencia de masa en el reactor.
Por lo tanto, se requiere un modelo de balance de población cuando se realizan simulaciones CFD para un biorreactor.
Se sabe que varios parámetros operativos afectan la transferencia de masa en un biorreactor.
Estos incluyen la velocidad del impulsor, el caudal de entrada de gas y la retención de gas. Las Figuras 10.2a1 y a2 ilustran el efecto de la velocidad del impulsor y el caudal de entrada de gas, respectivamente.
La Figura 10.2a1 muestra simulaciones realizadas a diferentes velocidades del impulsor en un biorreactor que contiene dos impulsores de tipo hélice de 3 palas y un impulsor de turbina Rushton.
Se ve que a medida que aumenta la velocidad del impulsor, también aumenta la turbulencia dentro del reactor.
Con un impulsor más alto, la intensidad de mezcla y la distribución de la fase gaseosa son más altas que con una velocidad más baja.
Sin embargo, el corte y el consumo de energía también aumentan.
Por lo tanto, para el funcionamiento óptimo de un biorreactor, es fundamental identificar la velocidad del impulsor que produce la mezcla requerida con un mínimo de corte y consumo de energía.
Es bien sabido que la turbina Rushton crea más turbulencia en comparación con los impulsores de tipo hélice.
Cultivos microbianos en reactores orbitales y agitados.
Los cultivos microbianos también se han realizado con éxito en biorreactores de un solo uso orbitales y agitados. Galliher describe un cultivo de E. coli en un dispositivo de un volumen de trabajo de 50 l.
Se logró una densidad celular de OD600 = 120, que corresponde a un peso celular seco de aproximadamente 40 g l−1.
Pseudomonas fluorescens se cultivaron en este dispositivo mencionado, en la que finalmente se obtuvo un peso celular seco final de más de 100 g l−1.
Los cultivos fueron similares a los rendimientos del proceso, que se obtuvieron en biorreactores tradicionales de tanque agitado.
Se aplicó una alimentación lineal en un biorreactor agitado y una alimentación exponencial para un biorreactor agitado en cultivos de E. coli, en los que se logró una densidad óptica final de hasta OD600 = 140.
La tasa máxima de crecimiento, que es aproximadamente la mitad de la reportada para un biorreactor, corresponde a la relación de las tasas máximas de transferencia de masa de oxígeno antes mencionadas para ambos sistemas.
Otro informe describió la aplicación exitosa de un reactor de tanque agitado para cultivos microbianos desechable de un volumen de trabajo de 250 ml para la producción de proteínas terapéuticas y anticuerpos monoclonales utilizando células CHO, Pichia pastoris y E. coli.
El rendimiento del cultivo en lo que respecta al crecimiento, la viabilidad celular y el título del producto fue similar al de los biorreactores convencionales. En el cultivo bacteriano se pueden lograr altas densidades celulares por encima de 400 g l-1 de peso celular húmedo.
También se aplicaron SUBs para procesos de cultivos microbianos anaeróbicos y hongos con bajas tasas de crecimiento. Los basidiomicetos Flammulina velutipes y Pleurotus sapidus, sensibles al esfuerzo cortante, se cultivaron en una escala de 5 l.
Se observaron diferencias en cuanto a morfología, actividades enzimáticas y crecimiento en cultivos fúngicos.
En el reactor de bolsa, se observó un crecimiento en forma de pequeños gránulos independientes, mientras que los cultivos STR mostraron una agregación intensa.
Los cultivos de F. velutipes alcanzaron una mayor concentración de biomasa en los cultivos microbianos y actividades peptidolíticas hasta el doble en comparación con los cultivos en un reactor de tanque agitado.
Otro concepto de reactor muy adecuado para la aplicación en el cultivo de hongos es el biorreactor Quorus, que está equipado con módulos de fibra hueca que contienen membranas capilares.
El crecimiento ocurre en la interfaz líquido-sólido de una membrana capilar a medida que las células se acumulan en la superficie de la membrana externa.
La producción de xilanasa recombinante en Aspergillus niger fue de 2 a 3 veces mayor en una escala de 2 l que en un enfoque por lotes en un reactor de tanque agitado.
Se comprobó la aplicación exitosa para la producción de 𝛽-lactamasa con Lactococcus lactis.
Además, la aplicación de SUBs para cultivos marinos tiene beneficios en comparación con el cultivo en bioreactores de tanque agitado de tanque de acero.
Dado que el alto contenido de sal no se puede disminuir en todos los casos, la aplicación de reactores de acero inoxidable es crucial debido a la corrosión.
Sin embargo, las alternativas como los reactores de vidrio suelen estar restringidas a una escala de 20 l.
La tecnología CELL-tainer aplicada para el cultivo de la microalga heterótrofa sensible al cizallamiento Cryptecodinium cohnii en medios marinos ha demostrado ser exitosa.
Aunque la limitación de nutrientes no se puede realizar debido a restricciones fisiológicas en este caso, la transferencia de gas fue suficiente para lograr un peso seco celular de más de 45 g l-1 a tasas de crecimiento máximas de 0,05 h-1.
Esta aplicación es un buen ejemplo de que la tecnología de un solo uso no se limita a los procesos farmacéuticos y al cultivo de semillas, sino que puede proporcionar una alternativa adecuada en muchas aplicaciones específicas.
Debido a la facilidad de instalación, los SUB se pueden aplicar sin mucho esfuerzo financiero para el desarrollo del proceso inicial.
La alternativa de un sistema de biorreactor tradicional adoptado, que tiene que soportar las condiciones de esterilización in situ, requiere generalmente costos de inversión más altos, que no pueden cubrirse en esta etapa del desarrollo del proceso.
En los últimos años, se caracterizaron, comprendieron mejor y ampliaron muchos sistemas SUB diferentes.
Sin embargo, la caracterización de ingeniería aún no ha llegado a su fin.
Una mejor comprensión del flujo de fluidos y el comportamiento de la transferencia de masa es de gran importancia para una predicción correcta de la dinámica en diversas condiciones de cultivo y, lo que es más importante, para mejorar el diseño de los SUBs.
Será necesario un grado similar de comprensión del flujo de fluidos como en el caso de los biorreactores agitados convencionales para lograr un grado similar de optimización y confiabilidad de los biorreactores de un solo uso.
El término «completamente entendido» en términos de entrada de energía, mezcla y transferencia de masa, ya que es válido para biorreactores de tanque agitado a escala de laboratorio, definitivamente no es cierto para ninguna escala y tipo de SUB todavía.
Sin embargo, las numerosas aplicaciones de los SUB en aplicaciones industriales y la amplia distribución en la comunidad científica reflejan el gran potencial de esta tecnología en muchas áreas de la biotecnología.
Los diversos diseños permiten numerosas aplicaciones adecuadas.
Si bien el título de producto alcanzable podría aumentarse para muchos productos en los últimos años, se redujeron las escalas de producción de muchos bioprocesos.
Hoy en día, existen muchos productos que se producen en lotes de unos pocos metros cúbicos por año, lo que hace que la utilización de SUB sea adecuada para fines de producción.
Sin embargo, además de la producción y el cultivo de semillas, los SUB son adecuados para la aplicación en la investigación y el desarrollo de procesos.
En este caso, las básculas suelen estar restringidas a unos pocos (cientos) litros.
La contaminación cruzada podría ser un factor más crucial que en la producción debido a los procedimientos no estandarizados y no automatizados.
Además, el entorno podría no tener las mismas condiciones estériles que las de una instalación de producción.
En este caso, la preesterilización y la factibilidad de trabajar en diferentes escalas como se muestra para reactores de onda mixta sin necesidad de un cambio de reactor reducen significativamente los riesgos de contaminación (cruzada).
El aumento del uso de SUB en la fabricación por contrato por este motivo, por ejemplo, en la escala de producción para ensayos clínicos, está en curso.
Aplicación microbiana de biorreactores.
La limitación en el valor kLa alcanzable en SUB conduce a restricciones en la aplicación microbiana de biorreactores.
Sin embargo, se describe un número cada vez mayor de ejemplos de la implementación exitosa de tecnología de un solo uso para el cultivo de bacterias, levaduras y hongos.
Un informe anterior indica la aplicación de un WAVE SUB para el cultivo de la levadura de panadería S. cerevisiae. La limitación de oxígeno disuelto no se determinó antes de alcanzar una concentración de biomasa de 8 g l−1 con un volumen de trabajo de 5 l.
El gas de entrada se mezcló con oxígeno para lograr una transferencia de masa de oxígeno suficiente.
Debido a la necesidad de una composición de gas definida en los cultivos de líneas celulares, las instalaciones para la mezcla de gases generalmente se emplean en SUB y, por lo tanto, no se necesitan más instalaciones.
También se describen en la literatura varias puntos de aplicación microbiana en biorreactores de mezcla de ondas.
Sin embargo, el agotamiento de oxígeno ocurrió a una concentración de biomasa final de menos de 2 g l-1 en un sistema BIOSTAT CultiBag RM al cultivar E. coli en modo por lotes antes de que ocurriera el agotamiento de oxígeno.
Con el fin de controlar y, por lo tanto, reducir la tasa de consumo volumétrico de oxígeno del cultivo, se aplicó el método de liberación de sustrato enzimático EnBase (BioSilta).
En este caso no fue necesaria la alimentación mecánica, lo que reduce los riesgos de contaminación.
Debido a la limitación del sustrato y la reducción concomitante de la demanda de oxígeno por celda, ahora se puede lograr una densidad óptica de OD600 = 30 (10 g l−1 de biomasa seca) en el mismo sistema.
Se comprobó la expresión heteróloga de la enzima alcohol deshidrogenasa (ADH).
Este enfoque es especialmente adecuado cuando los sistemas de monitoreo no son lo suficientemente confiables para el control de alimentación en línea.
Por lo tanto, se pueden evitar algunos inconvenientes de los sistemas de monitoreo actuales en los SUB. La aplicación de SUB para el crecimiento de Corynebacterium diphtheriae para la producción de vacunas fue investigada por Ullah et al.
En el reactor BIOSTAT CultiBag RM, se logró una densidad celular final de OD590 = 5 (aproximadamente 2 g l-1 de biomasa seca) en comparación con OD590= 7,3 en un biorreactor de tanques de acero inoxidable agitado aireado.
Hitchcock describió el cultivo de Listeria monocytogenes recombinante para la producción de vacunas.
En un BIOSTAT CultiBag RM con un volumen de trabajo de 5 l, se logró una densidad óptica final de OD600 = 12.
Un estudio en un BioWave SUB de 5 l de volumen de trabajo describió el crecimiento de un cultivo de E. coli a una OD600 de 15 sin ninguna limitación de oxígeno.
Debido a los valores de kLa más grandes en el CELL-tainer en comparación con otros biorreactores de mezcla de ondas, es muy adecuado para el cultivo microbiano.
En un estudio de Sanofi-Pasteur, se demostró que el crecimiento y la producción de proteínas en un cultivo de 7 l son comparables a los datos obtenidos en un reactor de tanque agitado convencional.
Se logró una densidad óptica final de OD600 = 60 en el modo por lotes y OD600 = 90 en el modo de alimentación por lotes.
Una investigación demostró el potencial del cultivo de E. coli en una ampliación del CELL-tainer en un volumen de 120 l. El cultivo se hizo funcionar en un modo de lote de alimentación limitador de nutrientes.
Con un volumen de trabajo de 12 l y solo después de 32 h, se alcanzó una DO600 final de más de 130. A escala diez veces mayor, se obtuvo un rendimiento de biomasa similar en aplicación microbiana de biorreactores.
Como ya se ha descrito para el cultivo de células, una aplicación adecuada de SUB es la utilización para cultivos de semillas.
Esta aplicación es beneficiosa, ya que generalmente se busca una densidad celular más pequeña que en los procesos de producción.
Además, la esterilidad es de importancia básica y crítica durante las múltiples transiciones entre diferentes recipientes de cultivo.
El CELL-tainer SUB se aplicó en un cultivo de semillas para la producción de lisina por Corynebacterium glutamicum.
En este caso, el cultivo de unos pocos mililitros a 15 l en la misma bolsa se logró con la aplicación de bloques de canales. Esto representa una buena alternativa al enfoque común del matraz batido.
La combinación y la variabilidad del crecimiento en varios matraces pueden tener un impacto en el rendimiento del proceso.
Por el contrario, la aplicación de un único biorreactor reduce el tiempo necesario para la preparación y permite el seguimiento y control del valor de pH y oxígeno disuelto durante todo el proceso de cultivo de la semilla.
Biorreactores para procesos de perfusión.
En las últimas décadas se han introducido muchos tipos de biorreactores para procesos de perfusión.
Comenzando con el llamado filtro giratorio (malla giratoria en el eje del agitador), se han aplicado con más o menos éxito dispositivos en biorreactores para procesos de perfusión como hidrociclones, sedimentadores, centrífugas, dispositivos de filtración, sistemas de fibra hueca, separación acústica y sistemas de flujo tangencial alterno.
Aunque ha habido un debate continuo entre los organismos reguladores y el desarrollo de procesos, cada vez se presta más atención a los procesos de tipo perfusión en los últimos años.
Las ventajas de los procesos de tipo perfusión o los procesos por lotes repetidos son obvias.
Debido a una productividad volumétrica significativamente mayor, se reducen los costos de producción.
Además, la calidad del producto puede ser más uniforme: las células permanecen continuamente en las mismas condiciones ambientales.
Hoy en día se vuelve cada vez más aceptado en el bioprocesamiento farmacéutico, principalmente debido a sus propiedades positivas en términos de reducción del ensuciamiento de los filtros y la capacidad de definir el corte del filtro.
Esto permite no solo la concentración de células sino también el aumento de la concentración del producto.
Aunque el ATF se aplica en SUB, la carcasa del filtro queda por esterilizar en autoclave.
Además, deben asegurarse las conexiones estériles al biorreactor para procesos de perfusión.
Sin embargo, el control del proceso del ATF es bastante complejo.
Un dispositivo de filtro interno está disponible para bolsas basculantes.
Este filtro flota en la superficie del líquido.
La desventaja de un filtro flotante de este tipo es que el filtro reduce la superficie para la transferencia de masa.
El ensuciamiento de estos filtros parece ser problemático.
Se han evaluado biorreactores para procesos de perfusión de fibra hueca de un solo uso para la producción de virus de influenza A de alto título.
Se cultivaron células MDCK infectadas con el virus de la influenza H1N1 en el espacio extracapilar a títulos de 1.8 × 1010 viriones ml-1.
El virus de la influenza se recolectó realizando múltiples cosechas durante el transcurso del cultivo.
Aunque los cultivos de células vegetales a menudo se cultivan como cultivos en suspensión a una mayor densidad celular en un rango más amplio de valores de pH y a una temperatura más baja, la mayoría de los biorreactores para procesos de perfusión adecuados para el crecimiento de cultivos de células animales también son adecuados para el crecimiento de células vegetales.
La alta relación superficie-volumen en los SUB de ondas mixtas favorece la iluminación en el cultivo.
En general, las bajas fuerzas de cizallamiento obtenidas en muchos SUB también favorecen el crecimiento de las células vegetales.
Los informes describen la aplicación un biorreactor en cultivos celulares de tabaco, uva y manzana hasta un volumen de 10 l. Se obtuvo un peso fresco máximo de 26 g l-1 d-1 en un cultivo discontinuo de una línea celular de tabaco.
Se cultivó una línea celular de uva Vitis vinifera a una tasa de crecimiento de 40 g l-1 d-1 de peso fresco en un biorreactor de mezcla de ondas, la tasa de crecimiento más alta reportada para células vegetales en un SUB.
Los cultivos de células en suspensión inmovilizadas de especies de la familia Taxaceae produjeron concentraciones de producto muy altas de casi 21 mgl−1 de paclitaxel.
Dado que los biorreactores de un solo uso agitados orbitalmente se pueden ampliar fácilmente, un estudio reciente se investigó el rendimiento del cultivo de una línea celular BY-2 de tabaco para la producción del anticuerpo monoclonal humano M12.
El crecimiento celular y la acumulación de proteína recombinante fueron comparables con el cultivo en matraz de agitación estándar en el cultivo aumentado 200 veces.
Se lograron pesos frescos de células finales de 300 – 387 g l-1 y rendimientos M12 de 20 mg l-1.
La baja fuerza de cizallamiento y la alta área superficial también conducen a la viabilidad del cultivo de células con una alta demanda de luz, como las algas fototróficas.
Estudios recientes describieron la aplicación de barras de luz basadas en LED en tres SUB diferentes para la propagación de algas diatomeas.
Los coeficientes de transferencia de masa volumétrica para todos los sistemas estuvieron por encima de 8 h−1, como lo mencionan los autores.
Se obtuvieron curvas de crecimiento idénticas para los cultivos de Phaeodactylum tricornutum en un biorreactor a una tasa de crecimiento máxima de 𝜇max = 0,773 d-1.
La diferencia en los resultados probablemente se deba a las diferentes fuentes de luz, de las cuales la luz fluorescente emite más energía en los espectros de luz y rojo, que las células pueden utilizar a través de los fitocromos que absorben la luz roja y azul.
Una bolsa fue rodeada completamente por 16 barras de luz LED en un biorreactor para procesos de perfusión equipado con una bolsa para un volumen de trabajo de 1 l.
Se cultivaron las algas verdes Chlorella vulgaris y Euglena gracilis para la producción de paramylon, un polisacárido.
Debido a la generación de calor de las varillas LED, que estaban ubicadas directamente en la superficie de la bolsa, se necesitaba capacidad de refrigeración.
Se obtuvo una tasa de crecimiento de 0,33 g l-1 d-1, lo que parece típico para los cultivos de C. vulgaris.
También se comprobó la factibilidad para el cultivo de E. gracilis. Sin embargo, los requisitos del control de temperatura pueden exceder la capacidad de los dispositivos instalados en varios SUB.
Los problemas que surjan de esto se pueden contrarrestar mediante una optimización adecuada.
Además de las células de plantas y algas, se han utilizado SUB de ondas mixtas para cultivar células de raíces peludas.
Se hizo funcionar un biorreactor SUB en un modo que permitía la inmersión temporal («flujo y reflujo»).
La iluminación se realizó con luz fluorescente externa.
El cultivo de raíces peludas de Hyoscyamus muticus y Panax ginseng se realizó a un volumen de trabajo entre 0,1 y 0,5 l durante 28 y 56 días, respectivamente.
Los rendimientos fueron hasta tres veces más altos que en los reactores de pulverización de vidrio.
En el mismo estudio se describe la aplicación exitosa de bolsas con malla integrada que soportan la inmovilización radicular.
Biorreactores de agitación orbital de un solo uso
Además de los biorreactores de mezcla de ondas y los SUB agitados, se han introducido varios otros tipos de biorreactores desechables para aplicaciones de cultivo celular durante los últimos 10 a 15 años como es el caso de los biorreactores de agitación orbital.
En un sistema de biorreactor agitado de 200 l, se lograron recuentos de células CHO de 7 × 106 células ml−1.
Se encontró una escalabilidad razonable al escalar desde tubos de 50 ml de 10 ml de volumen de trabajo hasta 200 l.
Sin embargo, los valores de kLa también están restringidos a menos de 25 h−1 en este sistema.
En promedio, los cultivos de células de mamíferos se caracterizan por una tasa específica de absorción de oxígeno de 5 a 10 pmol célula-1 día-1 (células CHO).
Al asumir una densidad celular requerida de 10 × 106 células ml−1, esto se traduce en un coeficiente de transferencia de oxígeno requerido de 15–30 h-1.
Por lo tanto, la mayoría de los SUB pueden admitir tales densidades de celdas.
Sin embargo, la transferencia de dióxido de carbono (CO2) parece ser más crítica.
La tasa de producción específica de CO2 para las células CHO es de 4–6 pmolcell−1 día−1.
La tasa de transferencia de masa del CO2 es el 89% de la del oxígeno.
El exceso de CO2 en el gas de escape (debido a la producción de las celdas) puede ser del 20 al 40%.
Por tanto, la capacidad de transferencia de CO2 requerida será inferior a la esperada:
Como resultado de la ecuación el coeficiente de transferencia de masa requerido para el CO2 debe ser al menos 1,5 veces mayor que el del oxígeno para garantizar una eliminación adecuada.
Aparte de esto, se necesita suficiente aire para eliminar el CO2 de la fase gaseosa (especialmente para los sistemas de superposición de aire).
De esto se puede concluir que la transferencia de CO2 necesita un kLa 2 de al menos 40-50h-1 a una densidad celular de 10-7 células ml-1 en biorreactores de agitación orbital.
Especialmente, en la última etapa del proceso, la presión parcial de CO2 en el líquido puede aumentar a valores de 100 a 150 mm Hg.
Una alta presión parcial de CO2 conduce a un aumento de la concentración de HCO-1 en el biorreactor, y por tanto a un mayor consumo de alcalino.
Como resultado, la osmolaridad en el cultivo puede aumentar de tal manera que comienza a tener un efecto decreciente sobre la viabilidad de las células.
Por lo tanto, se necesitan estrategias de control, que incluyen el mantenimiento de la composición del gas mediante la eliminación del exceso de CO2 y el control del pH.
Es obvio que en el caso de procesos de perfusión en biorreactores de tanques de acero inoxidable, donde se obtienen densidades celulares de 108 células ml−1, se necesitan requisitos especiales para evitar la limitación de oxígeno y la inhibición por CO2 o HCO3En muchos procesos de cultivo celular a gran escala, los biorreactores de tipo onda se utilizan para la expansión.
Estos procesos en biorreactores de agitación orbital son bastante laboriosos y se requieren al menos 6 a 8 pasos para sembrar un biorreactor a gran escala (200 ly más).
En un desarrollo conjunto de, se desarrolló un proceso de siembra simplificado, donde se pueden evitar varios pasos, lo que resulta en menos mano de obra necesaria y un menor riesgo de contaminación.
Mediante la aplicación de cuerpos de plástico removibles, que pueden colocarse debajo de la bolsa de cultivo celular, se crea un canal estrecho, disminuyendo el volumen inicial del cultivo en una bolsa de 25 l.
El volumen inicial aplicable en esta bolsa se reduce a 150 ml.
Al retirar los cuerpos de plástico, la bolsa se infla aún más hasta su forma final.
Un aumento de volumen gradual se vuelve factible con esta técnica.
La aplicación de estos «bloques de canales» reduce el número de pasos de semillas en 3 o 4.
La adición de medio paso a paso se puede realizar automáticamente (según la densidad celular) o diariamente.
Una bolsa/recipiente mediano solo debe acoplarse una vez y no es necesario transferir las células de los matraces agitadores a la bolsa o de una bolsa a otra.
Debido a la flexibilidad de las bolsas, el volumen de una bolsa se puede aumentar con un factor de 100 a 150.
Un procedimiento de aumento de volumen por ese factor no es factible para SUB agitados, porque de lo contrario el impulsor no estaría tocando la fase líquida.
En general, la entrada de energía cambiaría debido a las diferentes conexiones de los agitadores a la fase líquida.
Biorreactores de ondas mixtas
La introducción de ls biorreactores de ondas mixtas en 1999, siendo la primera tecnología SUB real, se centró completamente en el cultivo de células animales, de insectos y vegetales en cultivo en suspensión.
El biorreactor de «ondas» proporciona agitación mediante el movimiento suave de la bolsa (colocada en una bandeja basculante) y las células se pueden cultivar sin que se dañen con el cizallamiento de un agitador o las burbujas coalescentes.
Sin embargo, el SUB de «onda» está claramente restringido en la capacidad de transferencia de masa de oxígeno.
Singh informa un coeficiente de transferencia de oxígeno, kLa, en el rango de 1–5 h−1, lo que respalda el crecimiento celular de 3 × 10−6 células ml−1 para células NS0 y 2,7 × 10−6 células ml−1 para células HEK293.
Estudios más recientes en SUB de tipo “onda” informan sobre cultivos en los que se logró una densidad celular de hasta 1,5 × 10−7 células ml−1 (células CHO) en un proceso de perfusión incluso hasta 500 l de volumen de trabajo.
Durante la última década, se han introducido SUB agitados hasta volúmenes de trabajo de 2000 l.
Estos sistemas consisten en una bolsa desechable, que incluye un dispositivo de agitación, comparable a los diseños de biorreactores de ondas mixtas de acero inoxidable.
La bolsa se coloca en un revestimiento de tanque de acero inoxidable, que también contiene el dispositivo de transferencia de calor (camisa calentada eléctricamente o una camisa conectada a un termocirculador).
La geometría de estos reactores agitados de un solo uso es comparable a la de los biorreactores agitados tradicionales de acero inoxidable para cultivo celular, con una relación de aspecto de altura/diámetro de 1 : 1 a 2 : 1.
Algunos de los diseños tienen un agitador ubicado excéntricamente.
El agitador está conectado mediante una unidad magnética (GE Healthcare Life Sciences – XCellerexTM) o mediante un conjunto de sellado/cojinete de un solo uso (Sartorius Stedim Biotech SA; Thermo-Fisher Scientific Inc. – HycloneTM) como parte de la bolsa sí mismo.
El último diseño requiere una instalación y conexión más laboriosa del eje y el motor, pero da como resultado un diseño de bolsa más simple.
El agitador en sí está hecho o moldeado de polietileno o policarbonato, ambos materiales USP clase VI. Por lo general, para el cultivo celular se aplican uno o dos impulsores de paletas inclinadas de 45∘.
Las bolsas cuentan con puertos para la adición de medios y bases, y para el muestreo, respectivamente.
La gasificación se realiza con un microaspersor o con un anillo aspersor, una placa porosa o un tubo abierto debajo del agitador.
Las líneas de entrada y salida de gas están equipadas con filtros preesterilizados.
El filtro de gas de salida generalmente se calienta para evitar la condensación y, posteriormente, el bloqueo de los poros del filtro.
Los coeficientes típicos de transferencia de masa de oxígeno de estos SUB son comparables con los biorreactores de cultivo celular reutilizables tradicionales y oscilan entre 4 y 30 h−1, según la velocidad del agitador y la geometría de las aspas.
La potencia de entrada en estos reactores oscila entre 2 y 70 Wm -3.
La escalabilidad de estos SUB es comparable a la de los biorreactores de tanque de acero inoxidable agitado clásicos. Las células CHO se cultivaron en un volumen de trabajo de 250 l.
El cultivo fue comparable con los cultivos de 2 l y 2000 l en reactores de vidrio y acero, respectivamente.
Estos cultivos muestran resultados comparables en términos de crecimiento y productividad en estos reactores en comparación con un cultivo de 4 l en un biorreactor de ondas mixtas de laboratorio de tanque agitado de vidrio.
En el denominado “proceso XD”, se logró una densidad celular de 1,2 – 1,4 × 108 células ml−1 en un SUB de 50 l, lo que resultó en títulos de producto de un anticuerpo tipo IgG de >10 gl−1.
Una remodelación del diseño del rociador de un Hyclone SUB de una frita a un rociador de anillo arrojó resultados similares en términos de transferencia de masa de gas a los logrados en el XDRTM.
La transferibilidad entre diferentes SUB en una escala de 1000 l fue demostrada por Minow et al.
La transferencia de un proceso por lotes alimentado con células de ovario de hámster chino de un XDR a un Hyclone SUB se basó en mantener la transferencia de masa de oxígeno o la entrada de energía.
Finalmente, se identificó un rango de operación de entrada de potencia volumétrica de 10–31 Wm−3 para el Hyclone SUB.
Esto fue un 35% más alto que el del XDR.
Recientemente, se investigó la comparabilidad del cultivo de células de Spodoptera frugiperda-9 junto con el sistema de vector de expresión de baculovirus, que expresa una fosfatasa alcalina secretada, en un biorreactor de mezcla de ondas y el un biorreactor de un solo uso agitado.
Se encontraron tasas de crecimiento, consumos de sustrato y actividades de fosfatasa máximas comparables en ambos biorreactores.
Transferencia de Masa en Biorreactores
Para evaluar la transferencia de masa en biorreactores de un solo uso y las estrategias de ampliación/reducción de escala, es necesario considerar otros parámetros de ingeniería.
La dinámica de fluidos computacional (CFD) puede contribuir a ampliar el conocimiento sobre la dinámica de fluidos provocada por las diferentes tecnologías de agitación y agitación aplicadas y biorreactores de un solo uso.
Las características del flujo de fluidos en los SUB se investigaron por medio de imágenes de partículas y velocimetría de seguimiento, anemometría láser-Doppler y anemometría de película caliente.
CFD, incluida la información de la determinación experimental del flujo de fluido, se aplicó en diferentes biorreactores agitados y de mezcla de ondas.
El resultado valioso de las aplicaciones de CFD es la estimación de las velocidades de flujo de fluidos locales, la distribución de burbujas de gas y, por lo tanto, la disipación de energía local y el esfuerzo cortante.
El estrés de cizallamiento es crucial, ya que muchos SUB se emplean para líneas celulares sensibles al cizallamiento.
Las velocidades máximas de cizallamiento pueden ocurrir cuando las burbujas colapsan en la superficie.
Sin embargo, las velocidades de cizallamiento a la velocidad de la punta del agitador también pueden dañar las células debido a la fricción que se produce cuando una pala del agitador golpea la célula.
La inclusión de CFD en los estudios de escalado permite considerar el desarrollo del esfuerzo cortante a mayor escala desde una etapa muy temprana del diseño del reactor.
El impacto de las diferentes geometrías del borde inferior debido a las limitaciones de producción se investigó en una versión convencional y de un solo uso por medio de CFD.
Se encontró que los cambios en el campo de flujo secundario fueron de menor importancia en este caso para los parámetros de ingeniería relevantes, cuando se utilizó una turbina y un impulsor de paletas segmentadas.
El mismo enfoque es adecuado para estimar la entrada de energía más adecuada para aplicaciones de cultivo celular en las que debería haber un compromiso entre el logro de una transferencia de masa de gas suficiente y fuerzas de corte no muy altas.
En un estudio CFD, que consta de un impulsor de alcance marino de bombeo ascendente, se investigó con velocimetría de imagen de partículas, combinado con un estudio del impacto de las características del flujo de fluido en el rendimiento de un cultivo celular. Se observaron compartimentaciones y turbulencias de fluidos a varias velocidades de punta y volúmenes de trabajo.
Se utilizó para el cultivo una línea celular GS-CHO que producía un anticuerpo IgG.
Los impactos sobre el crecimiento celular y la viabilidad en las condiciones aplicadas (80–350 rpm y 1–2,4 l de volumen de trabajo) apenas se observaron, aunque se detectó una reducción significativa en la productividad de la proteína recombinante a 350 rpm y 1 l de volumen de trabajo.
Bajo estas condiciones, se lograron los números de Reynolds más altos, lo que probablemente provocó fuerzas de corte localmente muy altas en este caso.
Los desafíos en la ampliación de bioprocesos en SUB en tanques de acero inoxidable son similares a los que se encuentran en los reactores convencionales. Sin embargo, los diversos diseños, que están en el mercado, requieren varios enfoques individuales.
Dado que las geometrías de los SUB agitados son similares a las de los reactores de tanque agitado convencionales, se pueden adoptar metodologías de aumento de escala, lo que hace factibles las consideraciones de aumento de escala.
Sin embargo, la limitación de la estabilidad mecánica, el mayor esfuerzo para la producción de bolsas para sistemas de agitación directa, el mayor consumo de energía y las fuerzas de cizallamiento comparativamente más altas (especialmente debido al rociado directo) no permiten señalar tales SUB agitados como un método de elección. en cada caso.
Los sistemas de agitación orbital tienen un tamaño similar, pero características de transferencia de masa de gas totalmente diferentes sin necesidad de rociado.
Los sistemas de mezcla por ola, aunque se caracterizan por una mayor huella, exhiben fuerzas de cizallamiento bajas y, en algunos casos, excelentes coeficientes de transferencia de masa de gas, lo que los hace adecuados para cultivos microbianos.
Se debe lograr una utilización más eficiente del espacio que necesitan.
Escalabilidad de biorreactores de mezcla de ondas
Para estimar la potencia de entrada en los biorreactores de mezcla de ondas, se determina la cantidad de movimiento de un movimiento bidireccional entre los ángulos correspondientes −𝜑max y 𝜑max:
El impulso se puede analizar a partir de la observación del comportamiento del flujo del fluido y el cambio correspondiente del punto de gravedad y la distribución espacial del área superficial del fluido en la bolsa. Para poder establecer una relación clásica entre la potencia de entrada y el número de Reynolds, se introdujo un número de Reynolds modificado para procesos de ondas mixtas.
Por lo tanto, se supuso que la longitud característica lC del número de Reynolds se derivaba de la sección transversal basada en la altura del líquido h y el ancho de la bolsa wb:
lB representa la longitud real (longitud máxima) de la sección transversal del fluido.
La sección transversal AC depende de la geometría de la bolsa y distingue entre mayúsculas y minúsculas. Cuando se supone que el volumen debe girarse dos veces parcialmente a lo largo de la bolsa, se supone que su velocidad es
El factor constante C depende de la parte del volumen que pasa por el punto de rotación, por lo que depende de la geometría de la bolsa, el nivel de llenado y el ángulo de balanceo. El número de Reynolds modificado para reactores de bolsa se puede definir como:
La transición entre flujo laminar y turbulento se encontró en el área entre Re = 400 y 1000. Por lo general, la turbulencia se puede lograr en SUB con mezcla de olas, si el volumen de llenado no fue muy alto o muy bajo.
El tiempo de mezcla de los biorreactores de mezcla de ondas está en un rango similar al obtenido en los SUB agitados. Como se informó, se encontró que distintas regiones del 20 % al 30 % o incluso hasta el 50 % del volumen de llenado en relación con el volumen de la bolsa producen los números de mezcla más bajos.
Esto está de acuerdo con las mediciones del coeficiente de transferencia de masa de gas kLa en SUB mezclados con olas, en los que se logra un máximo en un volumen de llenado distinto del 40% del volumen de la bolsa.
Un aumento de los números de Reynolds modificados por encima de 1000 no condujo a una mayor reducción del tiempo de mezclado.
La escalabilidad de los SUB de ondas mixtas se puede lograr si una parte de la bolsa está bloqueada para el funcionamiento, por ejemplo, a través de abrazaderas o bloques de canales.
Dado que la altura del líquido, el ángulo de balanceo y la longitud característica permanecen constantes, se mantienen entradas de potencia similares en la misma plataforma oscilante para una amplia gama de volúmenes de trabajo.